核酸：包括DNA和RNA两大种类。核酸提取纯化的方法很多，主要包括：有机萃取（如：酚氯仿法），离心柱法和磁珠法。其中磁珠法以操作简单，提取效率高，可高通量和自动化的优势广泛受科研人员和实验室工作者青睐。而磁珠又是这一方法的核心部分，正确使用磁珠，能提高核酸产量和纯度。下面就介绍一下磁珠使用的注意事项：

150nm粒径磁球（成都新百基生物）

一、充分混匀磁珠

由于重力和磁珠特性，在长时间静置的条件下，容易沉降，出现珠浆不均匀，颜色也不均匀的现象。所以在使用前应立即涡旋混匀，直到浆液呈均匀的颜色，并且所有珠子都处于悬浮状态，如果磁珠悬浮液不是均质的，则会影响提取浓度或纯度。

二、选择合适的磁珠用量，即DNA/RNA-Beads比率

使用前必须确定磁珠起始量与获得的 DNA/RNA 量直接相关。磁珠如果太多，可能会得到污染物。磁珠太少，可能会影响产量。因此，在使用磁珠时，务必保证移液器量取的准确性，清理掉挂在移液器吸头外侧的任何液滴并定期校准移液器，使用良好的移液规范。

三、选择相匹配的磁珠

选择与样本类型（血液、组织、FFPE等）和核酸（DNA/RNA）匹配的磁珠（如硅基磁珠、羧基磁珠）。

选择与实验目的相匹配粒径大小的磁珠。

四、小心移液

使用磁珠提取DNA/RNA时，常常会存在“移出废液”的步骤，在这些步骤中丢失一些磁珠是正常的，所以在移液时应尽量减少磁珠的损耗。保持手指稳定，吸液速度不要太快，因为吸液的强度可以克服磁力。

五、磁珠的保存

磁珠在保存时切勿冷冻保存，应防止磁珠冻结（有特殊说明的磁珠除外）。磁珠冷冻后再解冻，表面容易出现裂痕，影响性能，从而影响提取效果。

一般情况下磁珠的保存条件为：2-8℃。值得注意的是，使用时也需要提前将磁珠置于室温，使其有足够的预热时间，一般为30min左右。

新百基拥有自主研发、生产磁珠技术平台，结合不同的缓冲液体系并根据样本种类搭配不同磁珠类型和用量，已成功生产78类提取试剂盒，提取产物高纯高得率，可直接用于下游应用，如：PCR，qPCR，二代测序，文库构建，芯片检测等。

https://www.bio-keystone.com/